SEI/UFU - 3504442 - Plano de Ensino

UNIVERSIDADE FEDERAL DE UBERLÂNDIA
Departamento de Biologia Celular-Histologia-Embriologia

Av. Para, 1720 - Bairro Umuarama, Uberlândia-MG, CEP 38400-902
Telefone: +55 (34) 3225-8481 - www.icbim.ufu.br/node/65

Timbre

Plano de Ensino

IDENTIFICAÇÃO

Componente Curricular:	Prática Integrada em Biomedicina
Unidade Ofertante:	Instituto de Ciências Biomédicas
Código:	GBD035		Período/Série:		6o.		Turma:
Carga Horária:						Natureza:
Teórica:	0	Prática:	240	Total:	240	Obrigatória:	(x )	Optativa:	( )
Professor(A):	Alberto da Silva Moraes e Vanessa Neves de Oliveira					Ano/Semestre:		2021/2
Observações:

EMENTA

Técnicas de análise crítica de protocolos experimentais ou protocolos já padronizados. Técnicas de análise de exequibilidade de protocolos experimentais em comparação com protocolos padronizados. Técnicas utilizadas para a execução de programas de controle de qualidade em laboratório de pesquisa e de rotina.Desenvolvimento de senso crítico para a leitura de trabalhos científicos. Técnicas de participação em seminários de formação e atualização. Técnicas de complementação em atividades de iniciação científica.

JUSTIFICATIVA

A Prática Integrada em Biomedicina está inserida no contexto da formação específica do biomédico da Universidade Federal de Uberlândia. Ela possibilita ao estudante o contato com as práticas profissionais laboratoriais de diversos campos de atuação do biomédico. Na Área 2, Morfologia, serão aplicados conhecimentos relacionados com as áreas das ciências morfológicas, Anatomia Humana e Biologia Celular, Histologia e Embriologia, onde o estudante poderá praticar rotinas laboratoriais relacionadas com essas áreas de conhecimento, adquirindo destreza na realização das atividades, e sedimentando os conhecimentos adquiridos nas disciplinas ministradas nos dois primeiros períodos do curso.

OBJETIVO

Considerando as transformações do mundo do trabalho que possam repercutir na formação do profissional biomédico, esta disciplina objetiva estimular os alunos a tomar ciência da amplitude das áreas de atuação desteprofissional, bem como demonstrar as possibilidades de atuação nas interfaces da biomedicina com áreas afins, garantindo que sua opção, dentre as diferentes especialidades, será baseada em opções conscientes. Neste sentido,há possibilidade de realizar este estágio em qualquer laboratório de pesquisa da UFU, bem como no Laboratório de Análises Clínicas do HC-UFU.

PROGRAMA

O programa a ser desenvolvido se baseará fundamentalmente num conjunto de atividades acadêmicas de maneira que, ao seu término, os alunos sejam capazes de:
1. Mostrar senso crítico
2. Mostrar iniciativa
3. Ministrar aula de forma didática
4. Apresentar e participar de seminários de uma forma adequada
5. Realizar levantamentos bibliográfi cos
6. Mostrar hábito de leitura
7. Compreender textos cientí ficos redigidos em inglês
8. Esboçar o seu próprio projeto de pesquisa
9. Desenvolver um projeto de pesquisa
10. Montar protocolos de experimentos a serem executados
11. Utilizar uma metodologia aprendida para responder a perguntas específicas
12. Perceber a limitação da metodologia empregada em seu trabalho
13. Discutir os resultados obtidos em seus protocolos experimentais
14. Redigir relatórios parciais e finais e trabalhos de comunicação científica
15. Executar uma função técnica específica

METODOLOGIA

Os alunos matriculados na disciplina foram divididos em quatro grupos de 5 a 6 estudantes. Começando com ogrupo D, a área de morfologia ficará responsável por um grupo por vez, em intervalos de 15 dias, contados de terça a sexta, e descontados os feriados e recessos. As atividades serão realizadas das 08:00 às 11:30 h. Cada grupo permanecerá na área, portanto, por um total de 60 h/a, totalizando 240 h/a de carga horária na área, sendo 120 h para cada um dos professores envolvidos. As atividades em cada departamento participante serão independentes e realizadas sucessivamente. Os alunos devem procurar o professor responsável pelo conteúdo seguindo o calendário divulgado. Para as atividades na Anatomia Humana, é requerido que cada estudante traga seu laptop. Na histologia, é preferível que traga, mas não obrigatório, podendo o estudante realizar as suas atividades de treinamento remotamente ou na sala de informática do bloco 8C.

CRONOGRAMA DE ATIVIDADES

Dia		Mês	Grupo	Departamento	Professor	Conteúdo
Terça-feira	03	05	D	Histologia	Alberto Moraes	Apresentação das atividades no DBHEM Introdução às técnicas de análise de imagem em microscopia e uso do software ImageJ Instalação do software e de plugins.
Quarta-feira	04			Histologia	Alberto Moraes	Abrir imagens no ImageJ através do Menu File ou arrastando e soltando arquivos na janela do software Trabalhando com tipos de imagens – coloridas em escala de cinza – Menu Image -> Type Trabalhando com imagens de colorações combinadas – Menu Plugins -> Color -> Color Deconvolution Trabalhando com camadas - Menu Image -> Stacks e Menu Plugins –> 3D
Quinta-feira	05			Histologia	Alberto Moraes	Ferramentas de normalização/equalização de fundo: a – Menu Process -> Subtract background; b – Usando CIDRE; c – Usando BaSiC Calibração de distâncias e absorbâncias – Menu Analyze -> Set Scale/Calibrate Escolhendo descritores de medida – Menu Analyze -> Set Measurements
Sexta-feira	06			Histologia	Alberto Moraes	Seleção de estruturas a serem analisadas: a – ferramentas de seleção manual; b – seleção por intensidade de cor – Menu Image -> Adjust -> Threshold (determinando limiares para seleção - Menu Analyze -> Histogram/Plot profile/Surface Plot); c – análise de partículas – Menu Analyze -> Analyze particles; d – Uso de máscaras – Menu Edit -> Selection -> Create selection/Create mask. Trabalhando com seleções: as regiões de interesse (ROIs) – Menu Analyze -> Tools -> ROI Manager. Fazendo medidas e salvando resultados. Interface com o Microsoft Excel e ajuste de idioma.
Terça-feira	10			Histologia	Alberto Moraes	Automatização de análises I: trabalhando com macros – Menu Plugins –> Macros. Gravando, editando e correndo macros. Automatização de análises II: rodando uma macro em várias imagens – Menu Process –> Batch –> Macro. Quantificação de fluorescência. Imagens originais e imagens invertidas, com ou sem equalização de fundo.
Quarta-feira	11			Histologia	Alberto Moraes	Plugin de análise de textura – Menu Plugins –> Texture –> GLCM ROI Manager Plugins de análise morfométrica – Menu Plugins –> MorpholibJ e Nucleus J. Reconstrução de imagens panorâmicas – Menu Plugins –> Stitching Análise telomérica – Menu Plugins –> Telometer
Quinta-feira	12			Histologia	Alberto Moraes	Análise de géis e blots – Menu Analyze –> Gels. Análise de vídeos de testes comportamentais – Menu Plugins –> MouBeAT. Inclui edição de vídeos no ffmpeg.
Sexta-feira	13			Histologia	Alberto Moraes	Resolução final de dúvidas e encerramento.
Terça-feira	17			Anatomia	Vanessa Neves	Apresentação da disciplina, divisão das atividades, apresentação básica do aplicativo para elaboração dos trabalhos
Quarta-feira	18			Anatomia	Vanessa Neves	Estudo teórico, elaboração e discussão do tema em questão.
Quinta-feira	19			Anatomia	Vanessa Neves	Estudo prático das peças anatômicas que serão utilizadas para elaboração do conteúdo digital.
Sexta-feira	20			Anatomia	Vanessa Neves	Sessão de fotos e edição de imagens
Terça-feira	24			Anatomia	Vanessa Neves	Desenvolvimento do conteúdo digital
Quarta-feira	25			Anatomia	Vanessa Neves	Apresentação do trabalho
Quinta-feira	26			Anatomia	Vanessa Neves	Publicação da atividade em mídia digital
Sexta-feira	27		A	Anatomia	Vanessa Neves	Apresentação da disciplina, divisão das atividades, apresentação básica do aplicativo para elaboração dos trabalhos
Terça-feira	31			Anatomia	Vanessa Neves	Estudo teórico, elaboração e discussão do tema em questão.
Quarta-feira	01	06		Anatomia	Vanessa Neves	Estudo prático das peças anatômicas que serão utilizadas para elaboração do conteúdo digital.
Quinta-feira	02			Anatomia	Vanessa Neves	Sessão de fotos e edição de imagens
Sexta-feira	03			Anatomia	Vanessa Neves	Desenvolvimento do conteúdo digital
Terça-feira	07			Anatomia	Vanessa Neves	Desenvolvimento do conteúdo digital
Quarta-feira	08			Anatomia	Vanessa Neves	Apresentação do trabalho
Quinta-feira	09			Anatomia	Vanessa Neves	Publicação da atividade em mídia digital
Sexta-feira	10			Histologia	Alberto Moraes	Apresentação das atividades no DBHEM Introdução às técnicas de análise de imagem em microscopia e uso do software ImageJ. Instalação do software e de plugins.
Terça-feira	14			Histologia	Alberto Moraes	Abrir imagens no ImageJ através do Menu File ou arrastando e soltando arquivos na janela do software Trabalhando com tipos de imagens – coloridas em escala de cinza – Menu Image -> Type Trabalhando com imagens de colorações combinadas – Menu Plugins -> Color -> Color Deconvolution Trabalhando com camadas - Menu Image -> Stacks e Menu Plugins –> 3D
Quarta-feira	15			Histologia	Alberto Moraes	Ferramentas de normalização/equalização de fundo: a – Menu Process -> Subtract background; b – Usando CIDRE; c – Usando BaSiC Calibração de distâncias e absorbâncias – Menu Analyze -> Set Scale/Calibrate Escolhendo descritores de medida – Menu Analyze -> Set Measurements
Terça-feira	21			Histologia	Alberto Moraes	Seleção de estruturas a serem analisadas: a – ferramentas de seleção manual; b – seleção por intensidade de cor – Menu Image -> Adjust -> Threshold (determinando limiares para seleção - Menu Analyze -> Histogram/Plot profile/Surface Plot); c – análise de partículas – Menu Analyze -> Analyze particles; d – Uso de máscaras – Menu Edit -> Selection -> Create selection/Create mask Trabalhando com seleções: as regiões de interesse (ROIs) – Menu Analyze -> Tools -> ROI Manager Fazendo medidas e salvando resultados. Interface com o Microsoft Excel e ajuste de idioma
Quarta-feira	22			Histologia	Alberto Moraes	Automatização de análises I: trabalhando com macros – Menu Plugins –> Macros. Gravando, editando e correndo macros Automatização de análises II: rodando uma macro em várias imagens – Menu Process –> Batch –> Macro Quantificação de fluorescência. Imagens originais e imagens invertidas, com ou sem equalização de fundo
Quinta-feira	23			Histologia	Alberto Moraes	Plugin de análise de textura – Menu Plugins –> Texture –> GLCM ROI Manager Plugins de análise morfométrica – Menu Plugins –> MorpholibJ e Nucleus J Reconstrução de imagens panorâmicas – Menu Plugins –> Stitching Análise telomérica – Menu Plugins –> Telometer
Sexta-feira	24			Histologia	Alberto Moraes	Análise de géis e blots – Menu Analyze –> Gels Análise de vídeos de testes comportamentais – Menu Plugins –> MouBeAT. Inclui edição de vídeos no ffmpeg Resolução final de dúvidas e encerramento
Terça-feira	28		B	Anatomia	Vanessa Neves	Apresentação da disciplina, divisão das atividades, apresentação básica do aplicativo para elaboração dos trabalhos
Quarta-feira	29			Anatomia	Vanessa Neves	Estudo teórico, elaboração e discussão do tema em questão.
Quinta-feira	30			Anatomia	Vanessa Neves	Estudo prático das peças anatômicas que serão utilizadas para elaboração do conteúdo digital.
Sexta-feira	01	07		Anatomia	Vanessa Neves	Sessão de fotos e edição de imagens
Terça-feira	05			Anatomia	Vanessa Neves	Desenvolvimento do conteúdo digital
Quarta-feira	06			Anatomia	Vanessa Neves	Apresentação do trabalho
Quinta-feira	07			Anatomia	Vanessa Neves	Publicação da atividade em mídia digital
Sexta-feira	08			Histologia	Alberto Moraes	Apresentação das atividades no DBHEM Introdução às técnicas de análise de imagem em microscopia e uso do software ImageJ. Instalação do software e de plugins.
Terça-feira	12			Histologia	Alberto Moraes	Abrir imagens no ImageJ através do Menu File ou arrastando e soltando arquivos na janela do software Trabalhando com tipos de imagens – coloridas em escala de cinza – Menu Image -> Type Trabalhando com imagens de colorações combinadas – Menu Plugins -> Color -> Color Deconvolution Trabalhando com camadas - Menu Image -> Stacks e Menu Plugins –> 3D
Quarta-feira	13			Histologia	Alberto Moraes	Ferramentas de normalização/equalização de fundo: a – Menu Process -> Subtract background; b – Usando CIDRE; c – Usando BaSiC Calibração de distâncias e absorbâncias – Menu Analyze -> Set Scale/Calibrate Escolhendo descritores de medida – Menu Analyze -> Set Measurements
Quinta-feira	14			Histologia	Alberto Moraes	Seleção de estruturas a serem analisadas: a – ferramentas de seleção manual; b – seleção por intensidade de cor – Menu Image -> Adjust -> Threshold (determinando limiares para seleção - Menu Analyze -> Histogram/Plot profile/Surface Plot); c – análise de partículas – Menu Analyze -> Analyze particles; d – Uso de máscaras – Menu Edit -> Selection -> Create selection/Create mask Trabalhando com seleções: as regiões de interesse (ROIs) – Menu Analyze -> Tools -> ROI Manager Fazendo medidas e salvando resultados. Interface com o Microsoft Excel e ajuste de idioma
Sexta-feira	15			Histologia	Alberto Moraes	Automatização de análises I: trabalhando com macros – Menu Plugins –> Macros. Gravando, editando e correndo macros Automatização de análises II: rodando uma macro em várias imagens – Menu Process –> Batch –> Macro Quantificação de fluorescência. Imagens originais e imagens invertidas, com ou sem equalização de fundo
Terça-feira	19			Histologia	Alberto Moraes	Plugin de análise de textura – Menu Plugins –> Texture –> GLCM ROI Manager Plugins de análise morfométrica – Menu Plugins –> MorpholibJ e Nucleus J Reconstrução de imagens panorâmicas – Menu Plugins –> Stitching Análise telomérica – Menu Plugins –> Telometer
Quarta-feira	20			Histologia	Alberto Moraes	Análise de géis e blots – Menu Analyze –> Gels Análise de vídeos de testes comportamentais – Menu Plugins –> MouBeAT. Inclui edição de vídeos no ffmpeg
Quinta-feira	21			Histologia	Alberto Moraes	Resolução final de dúvidas e encerramento.
Sexta-feira	22		C	Anatomia	Vanessa Neves	Apresentação da disciplina, divisão das atividades, apresentação básica do aplicativo para elaboração dos trabalhos
Terça-feira	26			Anatomia	Vanessa Neves	Estudo teórico, elaboração e discussão do tema em questão.
Quarta-feira	27			Anatomia	Vanessa Neves	Estudo prático das peças anatômicas que serão utilizadas para elaboração do conteúdo digital.
Quinta-feira	28			Anatomia	Vanessa Neves	Sessão de fotos e edição de imagens
Sexta-feira	29			Anatomia	Vanessa Neves	Desenvolvimento do conteúdo digital
Terça-feira	02	08		Anatomia	Vanessa Neves	Desenvolvimento do conteúdo digital
Quarta-feira	03			Anatomia	Vanessa Neves	Apresentação do trabalho
Quinta-feira	04			Anatomia	Vanessa Neves	Publicação da atividade em mídia digital
Sexta-feira	05			Histologia	Alberto Moraes	Apresentação das atividades no DBHEM Introdução às técnicas de análise de imagem em microscopia e uso do software ImageJ Instalação do software e de plugins
Terça-feira	09			Histologia	Alberto Moraes	Abrir imagens no ImageJ através do Menu File ou arrastando e soltando arquivos na janela do software Trabalhando com tipos de imagens – coloridas em escala de cinza – Menu Image -> Type Trabalhando com imagens de colorações combinadas – Menu Plugins -> Color -> Color Deconvolution Trabalhando com camadas - Menu Image -> Stacks e Menu Plugins –> 3D
Quarta-feira	10			Histologia	Alberto Moraes	Ferramentas de normalização/equalização de fundo: a – Menu Process -> Subtract background; b – Usando CIDRE; c – Usando BaSiC Calibração de distâncias e absorbâncias – Menu Analyze -> Set Scale/Calibrate Escolhendo descritores de medida – Menu Analyze -> Set Measurements
Quinta-feira	11			Histologia	Alberto Moraes	Seleção de estruturas a serem analisadas: a – ferramentas de seleção manual; b – seleção por intensidade de cor – Menu Image -> Adjust -> Threshold (determinando limiares para seleção - Menu Analyze -> Histogram/Plot profile/Surface Plot); c – análise de partículas – Menu Analyze -> Analyze particles; d – Uso de máscaras – Menu Edit -> Selection -> Create selection/Create mask Trabalhando com seleções: as regiões de interesse (ROIs) – Menu Analyze -> Tools -> ROI Manager Fazendo medidas e salvando resultados. Interface com o Microsoft Excel e ajuste de idioma
Sexta-feira	12			Histologia	Alberto Moraes	Automatização de análises I: trabalhando com macros – Menu Plugins –> Macros. Gravando, editando e correndo macros Automatização de análises II: rodando uma macro em várias imagens – Menu Process –> Batch –> Macro Quantificação de fluorescência. Imagens originais e imagens invertidas, com ou sem equalização de fundo
Terça-feira	16			Histologia	Alberto Moraes	Plugin de análise de textura – Menu Plugins –> Texture –> GLCM ROI Manager Plugins de análise morfométrica – Menu Plugins –> MorpholibJ e Nucleus J Reconstrução de imagens panorâmicas – Menu Plugins –> Stitching Análise telomérica – Menu Plugins –> Telometer
Quarta-feira	17			Histologia	Alberto Moraes	Análise de géis e blots – Menu Analyze –> Gels Análise de vídeos de testes comportamentais – Menu Plugins –> MouBeAT. Inclui edição de vídeos no ffmpeg Resolução final de dúvidas e encerramento

AVALIAÇÃO

No caso das atividades da Histologia, os estudantes serão avaliados conforme realizarem todas as atividades propostas, numa base diária. Para cada dia de trabalho presencial, será cobrado do estudante se consegue realizar todos os passos no software que será trabalhado, e para cada dia serão atribuídos 100 pontos. Ao final de 7 ou 8 dias de trabalho, a depender do grupo, o professor fará uma média artmética da pontuação obtida e ajustará o valor final de acordo com o peso da nota da Histologia na nota geral das Morfologias, sendo este 12,5 pontos no total de 25 da área.

No caso da Anatomia, as avaliações serão feitas mediante desempenho nas atividades propostas - apresentação de seminários (60 pontos),questionários avaliativos (40 pontos). A nota obtida também será ajustada pelo peso final da nota da Anatomia na disciplina, também de 12,5 pontos.

As avaliações serão realizadas sempre no horário da aula.

BIBLIOGRAFIA

Todo material para leitura corresponde a artigos científicos referentes aos temas a serem estudados, e retirados da base de dados PubMed, ou material de posse do professor que será disponibilizado aos alunos. Será dada preferência para os artigos open access, e que os alunos possam baixar casa, ou que o professor possa baixar pelo servidor da universidade e disponibilizar aos alunos por e-mail, Whatsapp, impresso ou via Moodle ou outra plataforma de LMS (Learning Management System).

APROVAÇÃO

Aprovado em reunião do Colegiado realizada em: ____/____/______

Coordenação do Curso de Graduação: _________________________

Documento assinado eletronicamente por Alberto da Silva Moraes, Professor(a) do Magistério Superior, em 11/04/2022, às 18:39, conforme horário oficial de Brasília, com fundamento no art. 6º, § 1º, do Decreto nº 8.539, de 8 de outubro de 2015.

A autenticidade deste documento pode ser conferida no site https://www.sei.ufu.br/sei/controlador_externo.php?acao=documento_conferir&id_orgao_acesso_externo=0, informando o código verificador 3504442 e o código CRC 766C92C7.

Referência: Processo nº 23117.020703/2022-66

SEI nº 3504442